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| | | Procedimento
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| | | Indossare i guanti.
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| | | Sangue venoso raccolto in K2EDTA. Mescolare per inversione la provetta del campione per ≈15”.
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| | | Prendere un capillare.
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| | | Riempirlo per capillarità circa fino al trattino indicatore.
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| | Far retrocedere il sangue di alcuni mm e con il dito indice tappare l’estremità opposta del capillare.
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| | | Disinfettare il capillare esternamente. |
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| | | Continuando a tenere tappata l’estremità del capillare appoggiare l’estremità libera sulla plastilina.
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| | | Affondare il capillare nella plastilina un paio di volte togliendo contemporaneamente il dito che teneva tappata l’altra estremità.
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| | | Ripetere la stessa procedura con altri capillari posizionandoli nell’apposito supporto.
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| | | Centrifugare i capillari a 12.000 giri per 5 minuti.
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| | | A un vetrino portaoggetti tagliato applicare alle due estremità per tutta la sua larghezza del nastro biadesivo.
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| | | Posizionare i capillari uno accanto all’altro sul vetrino in modo che le loro estremità poggino sul nastro biadesivo così rimarranno allo stesso.
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| | | Poggiare un vetrino coprioggetto 24x32 sui capillari in modo da coprire la zona buffy coat.
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| | Con una siringa ipodermica aggiungere molto delicatamente soluzione fisiologica nello spazio intercapillare tra vetrino portaoggetto e coprioggetto fino a che lo spazio in prossimità del buffy coat sia immerso nel liquido.
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